普純水可以養細胞嗎

1. pH對養殖生物和水質有何影響

pH是養殖水質狀態的晴雨表，通過監測pH，可以深入解讀水質及魚蝦的狀態，進而採取相應的技術調控措施，是養殖水質管理的重要手段。

（1）酸性水（pH小於6.5）對水質的影響浮游動植物不易繁殖，水體透明度會加大，易引起缺氧。

浮游植物的光合作用和微生物的生命活動受到抑制，影響整個水體的物質代謝和轉換。

增大了硫化氫等有害氣體的毒性，但減輕了氨的毒性。pH低於6時，水中90%以上的硫化物以硫化氫的形式存在，大大增加了硫化物的毒性。

（2）酸性水（pH小於6.5）對養殖生物的影響使魚蝦血液的pH下降，削弱其載氧能力，造成生理性缺氧。魚蝦代謝急劇下降，使魚蝦長期處於飢餓狀態。pH過低（小於4）時，會直接造成魚蝦死亡。

長時間pH過低，會引起魚鰓部潰爛，引起浮頭。

魚類酸中毒的表現是體色明顯發白。同時，水生植物呈現褐色或白色，水體中會存在很多死藻或瀕死的藻細胞。

（3）鹼性水（pH大於9）對水質的影響水中藍綠藻等有害浮游植物會繁殖過盛，增大水體毒性。

急劇增大氨的毒性，pH高於8.8時，水體中的銨會以分子氨（NH3）的形式存在，分子氨對魚蝦是劇毒的。

（4）鹼性水（pH大於9）對養殖動物的影響造成鰓部腐蝕，鰓呈充血狀，出現白鰓、黑鰓等，鰓部有大量分泌凝結物。體表有大量黏液，甚至可以拉成絲。

魚類鹼中毒的表現因刺激而狂游亂竄，水體中存在許多死藻或瀕死藻細胞。

2. 細胞培養使用娃哈哈純凈水有什麼影響

細胞培養使用娃哈哈純凈水有什麼影響
我用娃哈哈發現本不應該貼壁的脾細胞養了5天後竟然貼壁了，
也不知是什麼原因。

3. 全細胞反應為什麼要用緩沖液，純水不行嗎

您好，緩沖液是為了調節細胞反應的ph值，如果用純水，反應之後會產生影響反應繼續進行的物質，可能ph發生變化，從而使細胞失活。

4. 細胞實驗室是否需要純水，超純水，設計時要不要把純水

細胞實驗室肯定會用到純水、超純水的；不過細胞實驗室用水量不會太大，可以選用內小型實驗室純水容系統，現用現制；例如賽多利斯arium® mini 實驗室純水系統是針對實驗室用水量低於10L而設計，用於制備非關鍵應用所需的緩沖液和培養基。

5. 細胞實驗室是否需要純水、超純水，設計時要不要把純水系統設計進去

你做細胞實驗基本是離不開純水和超純水的，不論你是做動植物實驗、細胞免疫化學、PCR實驗、蛋白質純化以及電泳/凝膠分析，都是要用到超純水的。建議你設計時最好把超純水系統也設計進去，以後你的幾個實驗室直接用設計好的超純水系統的管道取水即可。你可以聯系南京權坤。

6. 純化水培養細胞、病毒有什麼後果

蒸餾是一種很費能量的純化水的方法，如果想達到18.2，要經過多次重蒸餾。費能量不版說，還費很多水（水利用率權很低，大部分水白白的浪費掉）。這種方法目前基本不用。
而電阻率18.2的水算是目前能達到的最高水質了。但也只是出水口而已。
用於細胞培養，動物注射是沒有問題的。
一般細胞培養實驗室都用這個。不過用自來水做為進口水源的很少（太費柱子）。一般是買那種桶裝水。進一步純發達到電阻率18.2的水，我們一般叫他超純水。
而在醫學上來講，這種水不叫注射用水。國家對注射用水也不是這樣規定的。一個是這樣成本太高（實驗室做做實驗沒問題）。另一個，只要水一接觸空氣，電阻就變了，沒法監控，也沒法檢收。
一般國內的注射用是用純化水蒸餾一回就算是合格了。當然，保存相對來說，比實驗室要求嚴格。

7. 如果一個細胞放進純水中會怎麼樣啊

如果說的是植物細胞
1.如果該細胞的細胞液濃度比外界溶液濃度高,那麼細專胞會吸水,液泡會變大屬.(但不脹破,因為有細胞壁)
2.如果該細胞的細胞液濃度比外界溶液濃度低,那麼細胞會失水,液泡會變小.
3.如果內外濃度一樣,則沒變化.

如果你說的是動物細胞.
1.如果該細胞的細胞液濃度比外界溶液濃度高,那麼細胞會吸水脹破.
2.如果該細胞的細胞液濃度比外界溶液濃度低,那麼細胞會失水皺縮.
3.如果內外濃度一樣,則沒變化.

8. 亞沸水好還是超純水好。做肝細胞培養的。用壓沸水好還是超純水好。超純水還有必要做壓沸水嗎

超純水的電阻率是18.25，這個就是水中的雜質去除之後，氫離子和氫氧根離子保持平衡的一個數值，剛取得水至少是不需要做的，之後的就看你怎麼保存了

9. 培養動物細胞為什麼用超純水或三蒸水

培養細胞的所有物品無菌是最基本的，所以水要用超純水或三蒸水！因為一旦受污染這實驗就廢了

10. 請問普通的玻璃培養皿能用來養貼壁細胞嗎需要做哪些處理呢

想要細胞好好貼壁，所使用的玻璃底培養皿進行細胞培養之前，要確認已經包被了特定的蛋白試劑。

自己動手包被
培養不同的細胞，需要的包被試劑也不同。同時，因為用於包被的蛋白是生物產物，所以不同公司的包被蛋白的產品純度和用量都是不同的，本技術帖只是提供參考，具體的包被試劑用量還是要參考所用品牌的說明書。並且最好以自己所用的試劑先做一個梯度實驗，找出最適合的包被濃度。

這里以 Poly-L-Lysine 為例：

PLL包被適用於絕大多數細胞，尤其適用於中樞系統神經元的培養。在使用時需要使單位面積上的蛋白含量（μg/cm2）達到理想的量。本例中PLL推薦包被的用量為 2μg/cm2。需要根據包被面積，包被體積，來計算所需要蛋白質的量。
比如：35mm玻璃底培養皿，細胞生長面積是3.5cm2，包被面積是4.1cm2，包被液體積是400μl，那根據推薦用量2μg/cm2。那麼單孔中需要8.2μg的PLL，如果只加入400μl的PLL溶液，那PLL的溶液濃度為20.5μg/ml（約為 20μg/ml）。所以，需要用超純水將原液進行稀釋。

具體步驟：
1.使用超純水按照1:5稀釋PLL原液。
2.在每個35mm玻璃底培養皿中加入400μl的PLL稀釋液。
3.室溫孵育1-2小時，吸出PLL稀釋液。
4.使用2ml PBS溶液或無血清培養基小心的清洗3次，吸盡清洗液。
5.直接加入細胞懸液進行培養。