普纯水可以养细胞吗

1. pH对养殖生物和水质有何影响

pH是养殖水质状态的晴雨表，通过监测pH，可以深入解读水质及鱼虾的状态，进而采取相应的技术调控措施，是养殖水质管理的重要手段。

（1）酸性水（pH小于6.5）对水质的影响浮游动植物不易繁殖，水体透明度会加大，易引起缺氧。

浮游植物的光合作用和微生物的生命活动受到抑制，影响整个水体的物质代谢和转换。

增大了硫化氢等有害气体的毒性，但减轻了氨的毒性。pH低于6时，水中90%以上的硫化物以硫化氢的形式存在，大大增加了硫化物的毒性。

（2）酸性水（pH小于6.5）对养殖生物的影响使鱼虾血液的pH下降，削弱其载氧能力，造成生理性缺氧。鱼虾代谢急剧下降，使鱼虾长期处于饥饿状态。pH过低（小于4）时，会直接造成鱼虾死亡。

长时间pH过低，会引起鱼鳃部溃烂，引起浮头。

鱼类酸中毒的表现是体色明显发白。同时，水生植物呈现褐色或白色，水体中会存在很多死藻或濒死的藻细胞。

（3）碱性水（pH大于9）对水质的影响水中蓝绿藻等有害浮游植物会繁殖过盛，增大水体毒性。

急剧增大氨的毒性，pH高于8.8时，水体中的铵会以分子氨（NH3）的形式存在，分子氨对鱼虾是剧毒的。

（4）碱性水（pH大于9）对养殖动物的影响造成鳃部腐蚀，鳃呈充血状，出现白鳃、黑鳃等，鳃部有大量分泌凝结物。体表有大量黏液，甚至可以拉成丝。

鱼类碱中毒的表现因刺激而狂游乱窜，水体中存在许多死藻或濒死藻细胞。

2. 细胞培养使用娃哈哈纯净水有什么影响

细胞培养使用娃哈哈纯净水有什么影响
我用娃哈哈发现本不应该贴壁的脾细胞养了5天后竟然贴壁了，
也不知是什么原因。

3. 全细胞反应为什么要用缓冲液，纯水不行吗

您好，缓冲液是为了调节细胞反应的ph值，如果用纯水，反应之后会产生影响反应继续进行的物质，可能ph发生变化，从而使细胞失活。

4. 细胞实验室是否需要纯水，超纯水，设计时要不要把纯水

细胞实验室肯定会用到纯水、超纯水的；不过细胞实验室用水量不会太大，可以选用内小型实验室纯水容系统，现用现制；例如赛多利斯arium® mini 实验室纯水系统是针对实验室用水量低于10L而设计，用于制备非关键应用所需的缓冲液和培养基。

5. 细胞实验室是否需要纯水、超纯水，设计时要不要把纯水系统设计进去

你做细胞实验基本是离不开纯水和超纯水的，不论你是做动植物实验、细胞免疫化学、PCR实验、蛋白质纯化以及电泳/凝胶分析，都是要用到超纯水的。建议你设计时最好把超纯水系统也设计进去，以后你的几个实验室直接用设计好的超纯水系统的管道取水即可。你可以联系南京权坤。

6. 纯化水培养细胞、病毒有什么后果

蒸馏是一种很费能量的纯化水的方法，如果想达到18.2，要经过多次重蒸馏。费能量不版说，还费很多水（水利用率权很低，大部分水白白的浪费掉）。这种方法目前基本不用。
而电阻率18.2的水算是目前能达到的最高水质了。但也只是出水口而已。
用于细胞培养，动物注射是没有问题的。
一般细胞培养实验室都用这个。不过用自来水做为进口水源的很少（太费柱子）。一般是买那种桶装水。进一步纯发达到电阻率18.2的水，我们一般叫他超纯水。
而在医学上来讲，这种水不叫注射用水。国家对注射用水也不是这样规定的。一个是这样成本太高（实验室做做实验没问题）。另一个，只要水一接触空气，电阻就变了，没法监控，也没法检收。
一般国内的注射用是用纯化水蒸馏一回就算是合格了。当然，保存相对来说，比实验室要求严格。

7. 如果一个细胞放进纯水中会怎么样啊

如果说的是植物细胞
1.如果该细胞的细胞液浓度比外界溶液浓度高,那么细专胞会吸水,液泡会变大属.(但不胀破,因为有细胞壁)
2.如果该细胞的细胞液浓度比外界溶液浓度低,那么细胞会失水,液泡会变小.
3.如果内外浓度一样,则没变化.

如果你说的是动物细胞.
1.如果该细胞的细胞液浓度比外界溶液浓度高,那么细胞会吸水胀破.
2.如果该细胞的细胞液浓度比外界溶液浓度低,那么细胞会失水皱缩.
3.如果内外浓度一样,则没变化.

8. 亚沸水好还是超纯水好。做肝细胞培养的。用压沸水好还是超纯水好。超纯水还有必要做压沸水吗

超纯水的电阻率是18.25，这个就是水中的杂质去除之后，氢离子和氢氧根离子保持平衡的一个数值，刚取得水至少是不需要做的，之后的就看你怎么保存了

9. 培养动物细胞为什么用超纯水或三蒸水

培养细胞的所有物品无菌是最基本的，所以水要用超纯水或三蒸水！因为一旦受污染这实验就废了

10. 请问普通的玻璃培养皿能用来养贴壁细胞吗需要做哪些处理呢

想要细胞好好贴壁，所使用的玻璃底培养皿进行细胞培养之前，要确认已经包被了特定的蛋白试剂。

自己动手包被
培养不同的细胞，需要的包被试剂也不同。同时，因为用于包被的蛋白是生物产物，所以不同公司的包被蛋白的产品纯度和用量都是不同的，本技术帖只是提供参考，具体的包被试剂用量还是要参考所用品牌的说明书。并且最好以自己所用的试剂先做一个梯度实验，找出最适合的包被浓度。

这里以 Poly-L-Lysine 为例：

PLL包被适用于绝大多数细胞，尤其适用于中枢系统神经元的培养。在使用时需要使单位面积上的蛋白含量（μg/cm2）达到理想的量。本例中PLL推荐包被的用量为 2μg/cm2。需要根据包被面积，包被体积，来计算所需要蛋白质的量。
比如：35mm玻璃底培养皿，细胞生长面积是3.5cm2，包被面积是4.1cm2，包被液体积是400μl，那根据推荐用量2μg/cm2。那么单孔中需要8.2μg的PLL，如果只加入400μl的PLL溶液，那PLL的溶液浓度为20.5μg/ml（约为 20μg/ml）。所以，需要用超纯水将原液进行稀释。

具体步骤：
1.使用超纯水按照1:5稀释PLL原液。
2.在每个35mm玻璃底培养皿中加入400μl的PLL稀释液。
3.室温孵育1-2小时，吸出PLL稀释液。
4.使用2ml PBS溶液或无血清培养基小心的清洗3次，吸尽清洗液。
5.直接加入细胞悬液进行培养。